Georges Delacroix

“ Cicatrisation d'une plaie longitudinale d'une tige de
Poirier
17 a. Début de la cicatrisation. — La fente, F, a pénétré jusqu'au bois qui, dans la portion correspondante, s'infiltre de gomme de blessure, B.G. De chaque côté de la fente, le bourrelet se développe : B, sa portion extra-ligneuse ; B. l, sa portion ligneuse ; Ca.B, cambium libéro-ligneux du bourrelet; Ca, cambium normal de la tige ; L, liber ; P. parenchyme cortical ; S, périderme. ”

“ St, stroma mycélien remplaçant les tissus de la feuille ; C. p, cellules du parenchyme foliaire ayant persisté dans le stroma ; Hy, hyménium ascospore ; Sh, couche sous-hyméniale. — 69. Asque octospore As, et paraphyse, Pa. — 70. Germination de l'acospore, Sp (d'après M. Brefeld) . — 71. Mycélium issu d'une spore germée et portant des conidies Co.
Rhytisma acerinum Fries. — 72. Feuille d'Érable Sycomore (Acer pseudoplatanus) portant les stromas encore stériles du parasite à la fin de l'été. — 73. Fructifications ascospores après l'hiver, sur les taches (grossissement faible) . ”

“ Une pycnide émettant ses stylospores brunes, cloisonnées. — 2. Spermogonies ramifiées : My, mycélium noir, bourgeonnant. — 3. Périthèce ascospore s'ouvrant par une fente transversale. — 4. Asque octospore. (D'après M. Prillieux.)
Capnodium Citri Penzig (Meliola Citri Saccardo) sur les Aurantiacées.
— 5. Spermogonie émettant ses spermaties : My, mycélium émettant, une forme conidienne à conidies noires rameuses, Triposporiam. — 6. Périthèces ascospores ; celui de droite est hérissé de soies noires et rigides à sa partie supérieure. — 7 a. Asque octospore ”

“ Le mycélium. My, porte la pyenide parasite, Ci, du Cicinnobolus Cesatii, sur le trajet d'un filament : F.m, partie terminale morte du filament parasité qui porte la pyenide : St, les stylospores de Cicinnobolus s'échappant en un fil. — 15. Asque octospore, unique, du périthèce.
Ineiula americana How. (Uncinula spiralis Berkeley et Curtis) , produisant l' « Oïdium de la Vigne ». — 16. Grain de raisin envahi et fendu par la maladie. — 16 bis. La forme conidienne (Oïdium Tucheri Berkeley) . — 17. Périthèce avec ses fulcres allongés et enroulés en se à l'extrémité. — 18. ”

“ Coupe transversale de la même, au moment de la formation des spores. (D'après Tulasne.) — 6. Mycélium, My, dans l'intérieur d'une cellule. —7 a et b. Mode de formation des spores. La paroi du filament mycélien fructifère se gélifie et s'étrangle autour des masses plasmatiques qui sont le rudiment des spores. (D'après M. Prillieux.) — 8. Germination de la spore, Sp, dans l'eau : Pr, promycélium ; Spd, sporidies naissant aux cloisons. — 9. Sporidie se développant sous forme de levures dans un milieu nutritif. — 10. Germination de la sporidie par un filament dans l'air humide. ”

“ Liège cicatriciel du tubercule de Pomme de terre. — 1. A la suite d'une plaie intéressant le parenchyme amylifère : C.s, cellules amylifères desséchées ; Sb.s, liège cicatriciel superficiel desséché; Sb., liège nouvellement formé, en voie de différenciation ; C.g., couche génératrice du liège ; P.a., parenchyme amylifère. (D'après M. Prillieux, figure inédite.) — 1 bis. Formation du liège cicatriciel à son début, mêmes lettres ; c.d cellules amylifères déchirées par le traumatisme.
2. Cicatrisation d'une plaie superficielle sur une branche jeune de Poirier : Ep, Épiderme ”

“ Ba, bactéries se mouvant dans le protoplasma de la cellule.
Graisse des Haricots.
20. Gousses de Haricots montrant les taches de la « Graisse » : a, tache jeune à la pointe de la gousse ; b, tache plus âgée, vers le milieu de la gousse. — 21. Bactérie : forme s'observant dans la pulpe de la gousse malade et en culture jeune. Gross. environ 2.000 diamètres. — 22. Bactéries : formes observées dans des cultures âgées : 1, formes en chaînes et en filaments sans cloisons, encore assez courts ; 2, forme spirille allongé ; 3, forme de filament très long, enchevêtré et sans cloisons. ”

“ Le mycélium agrégé en cordons blanchâtres. — 21. Baside et spores (jaunes) . — 22. Germination de la spore : Fg, filament germinatif. — 23. Filaments du mycélium, montrant les boucles, bo.
Hydnum diversidens Fries. — 24. Coupe" longitudinale dans une fructification montrant les dents de l'hyménium.
Typhula variabilis Riess. — 25. Fructification basidiospore issue d'un sclérote. — 25 bis. Un filament fertile, terminé en baside, Ba. — 26. Les sclérotes noirs produits par le mycélium blanc filamenteux. — 27. Coupe dans un sclérote : Ec, portion corticale, avec filaments à membrane noire ”

“ Filament fructifère de la forme conidienne (Oidium monilioides Link) : Co, conidie terminale de la chaîne, mûre, prête à se détacher.
— 2. Germination d'une conidie, Co, à la surface de la feuille. — 3. Mycélium, My, à la surface de la feuille, la perforant par un suçoir, Su. — 4. Périthèce enveloppé dans le mycélium, My, et portant des appendices bruns, courts, les fulcres, Fu.— 5. Asque octospore, différenciée au printemps suivant. ”

“ Coupe d'une pycnide jeune surmontée d'un épais stroma. —23. Coupe d'une pycnide adulte (la partie profonde de la pycnide est seule couverte de stérigmates) . — 24. Deux stylospores (brunes à maturité) . — 25. Stylospore germant (D'après M. Cavara.) — 26. Mycélium vu dans la pulpe.
Pourridiés.
Rosellinia quereina R. Hartig. — 1. Revêtement floconneux de la base d'une tige montrant des périthèces, P. — 2. Extrémité d'un filament conidifère : Co, conidies. — 3. Coupe d'un périthèce passant par l'ostiole : Ce, Couche externe noire et cassante ; C. i, couche interne blanche ”

“ My. s, mycélium agencé en stroma lâche.
77 b. Forme à téleutospores, Té, du même, germant sur le support même : B.g., début du filament germinatif. — 77 c. Germination de la téleutospore (absence de promycélium, une seule sporidie par cellule de téleutospore : Sg, stérigmate ; Spd, sporidie. (D'après M. Plowright.)
Rouille vésiculeuse des aiguilles de Sapin pectiné.
[Peridermium, columnare (Alberti et Schweinitz) Kunze. — Catyptospora Goeppertiana J. Kühn.]
78. Aiguille de Sapin pectiné, portant sur la face inférieure la forme Peridermium à divers états de développement. — 79. ”

“ I. Cellule terminale d'un filament mycélien, à 2 noyaux. —
II. Formation de la cellule-mère d'urédospore par bourgeonnement terminal de la cellule (I) avec division indirecte des 2 noyaux. — III. Différenciation de l'urédospore par division transversale de la cellulemère C.m.u de (II) : Pé, pédicelle ; Ur., urédospore (tous deux à 2 noyaux) . (D'après M. Sappin-Trouffy.)
13. —Urédospores de Puccinia graminis. Mêmes lettres que 11 bis.
14. — Germination d'une urédospore, Ur, de Puccinia graminis par un filament pénétrant la feuille de Blé par l'ostiole d'un stomate, St. ”

“ Racines de Caféier présentant les renflements, N, de taille et forme différentes, produits par l'Heterodera radicicola. — 3. Un renflement grossi environ 10 fois. — 4. Portion de la coupe d'une nodosité : K, Kystes renfermant des oeufs, libres en OE ; en K.v, kystes vides. (Figures du Dr E. Goeldi.) — 5. Portion de coupe transversale dans une galle jeune produite sur le Melon par le même Helerodera radicicola ; Pc., parenchyme cortical ; C.v, cellules vasculaires remplaçant le cylindre central ; G, cellule géante médullaire, présentant plusieurs noyaux, N. (D'après M. Molliard.) ”

“ Mycélium dans l'intérieur des cellules du premier entrenoeud.
Leptosphoeria herpolrichoicles de Nolaris. — Un périthèce isolé, garni de poils à sa partie inférieure, enfoui dans les tissus du chaume. — 19. Asque et paraphyses. — 20. Ascospore germant.
Noir des Céréales.
Sphaerella Tulasnei Janczewski. —21. Une fructification conidienne (Gladosporium herbarum Link) , sortant au dehors de la feuille. — 22. Extrémité d'un filament fructifié de Gladosporium, forme géante. — Id., la forme naine. — 24. Forme conidienne du même Cladosporium, forme Hormodendron cladosporioides Saccardo. — 25. ”

“ Coupe de la pycnide. — 18. Stylospores et stérigmates. — 18. Stylospores isolées.
Gloeosporium ampelophagum (de Bary) Saccardo [Sphaceloma ampelinum de Bary] produisant « l'Anthracnose de la Vigne ». —20. Sarment de Vigne portant un chancre adulte. — 21. Plusieurs chancres jeunes. — 22. Feuilles présentant les macules brunes déchirées de l'Anthracnose. — Grains de raisin portant les macules. — 24. Portion de la fructification reposant sur le stroma mycélien : Stg, stérigmate ; Co, conidie. — 25 a et b. Deux germinations de conidies à divers degrés de développement. (D'après M. Prilleux.) ”

“ Un des périthèces de fig. 9. — 10 bis. Périthèces jeunes, Pé, encore enfermés dans le tissu de la première gaîne, détruite peu à peu par le mycélium, My, et persistant autour des périthèces. — 11. Asque mûr octospore. — 12. Ascospores mûres. — 13. Germination des spores par filaments : A, après 24 heures ; B, après 4 jours. — 13 bis. Asque jeune avec paraphyse destinée à se gélifier. — 14. Asque déhiscent transversalement près de sa base. — 15. Masse de stroma sur le premier entrenoeud, entre celui-ci et les débris de la gaîne — 16. ”

“ K) épaississent leur paroi et prennent 2 ou 4 noyaux. (D'après M. Sappin-Trouffy.)
16. Schéma de la maturation des téleulospores de Puccinia graminis. — I, Les téleutospores jeunes, formées par le même procédé que les urédospores (fig. 12) , ont leurs cellules munies de 2 noyaux. — II. Téleutospore adulte : Les 2 noyaux de chaque cellule se sont fusionnés en un seul : Fécondation pour M. Dangeard. ”

“ St, stérigmates. — 16. Une conidie, Co, en voie de germination ; z, zoospore (d'après de Bary) . — 17. Germination de l'oeuf : le protoplasma de l'oeuf se divise en zoospores; l'endospore qui les renferme fait hernie en dehors de l'exospore de l'oeuf. (D'après de Bary.)
Cystopus cubieus (Persoon) de Bary. — 18. Un conidiophore et conidies isolés (la terminale à membrane uniformément épaissie ; les intermédiaires à épaississement équatorial) .
Pythium de Baryanum Hesse. — 19. Filament de mycélium. — 20. Conidies : en place, à gauche ; germant par un filament à droite. — 21. ”

“ Coupe longitudinale de la même montrant les cavités gallaires. — 54. Un appendice externe ramifié de la galle.
Coléoptères. — 55. Galles de Centorhynchus Sulcicollis sur le collet d'un navet ; à droite, une galle ouverte montrant les cavités gallaires.
— 56. Portion grossie schématisée d'une coupe dans la galle ; C., la cavité gallaire ; R, tissu rongé par la larve ; F, faisceaux normaux de la racine ; F.g, faisceaux gallaires de nouvelle formation ; Hy, cellules constituant l'hypertrophie gallaire.
Planche LIV
Planche LV (Supplre)
Roncet de la Vigne. ”

“ Portion de la lig. 17 à un fort grossissement montrant le développement de la Sphacélie : Ov, cavité de l'ovaire ; Ce, rangée de ses cellules externes conservées; Sir., stroma de la Sphacélie ; Slg, stérigmates ; Co, conidies. — 19. Germination des conidies. — 20. Un Ergot (Sclerotium elavuslbe Candolle) , E, présentant la forme ascospore, Pe. — 21. Coupe longitudinale de la forme ascospore ; la boule pédicellée est couverte de périthèces s'ouvrant à sa surface. — 22. Un périthèce isolé : po, son pore d'ouverture ; A, asques encore jeunes. — 23. Un asque octospore en a ”

“ Hy, parenchyme hypertrophié produit par l'action irritative du Puceron. — 32. Coupe transversale de bois normal de Pommier : Fi, fibre, R.m, rayon médullaire ; V, Vaisseau. — 33. Coupe transversale dans le parenchyme hypertrophié, Hy, de la fig. 31.
Hémiptères (Suite) . —34. Cloque des Feuilles de Groseillier produite par un Aphis. — 35. Racine de Vigne attaquée par le phylloxéra : Racines hypertrophiées par places ; radicelles déformées. (D'après Max. Cornu.) — 36. ”

“ Le bois imprégné de gomme de blessure persiste tel. (Figure inédite de M. Prillieux.)
Plaie longitudinale d'un rameau de Robinier Faux-Acacia.
18. La blessure a atteint le cambium sans l'endommager. La couche génératrice, C, fonctionnant normalement, produit par cloisonnement un bourrelet, B, qui se subérisera à la périphérie. (D'après Trécul.)
Cicatrisation d'une plaie de grêle de la tige Herbacée de
Vigne.
19 a. État de la plaie en voie de guérison après 4 mois. Le bourrelet se forme de chaque côté. — 19 b. ”

“ Rameau de Pommier, portant un chancre développé. — 2. Coupe transversale dans un stroma fructifié, Str., présentant à la fois des conidies, Co, et des périthèces, Pé.— 3. Conidies en place très grossies : Stg, stérigmates cloisonnés. — 4. Germination des conidies, Co, qui s'anastomosent en An et germent par des filaments produisant des conidies secondaires, Co. s. (D'après M. R. Hartig.) — 5. Coupe longitudinale du bois dans la partie centrale du chancre : V, vaisseau ; P. p, portion de la paroi ponctuée ; A", gomme de blessure ; My, mycélium. (D'après M. Goethe.) — 6. ”

“ Les cellules teintées sont tuées. (D'après M. Prunet.)
Planche XL
Planche XLI
Black-rot (Suite) .
15. Coupe transversale d'un grain de raisin récemment attaqué : le mycélium, My, est encore sous la cuticule, Cutic. (D'après MM. Ravaz et Bonnet.) — 16. Mycélium clans une région récemment altérée du grain, coupe tangentielle : Ce, cellules de la pulpe. (D'après MM. Ravaz et Bonnet.) — 17. Coupe d'un péri thèce ascospore : Ost, son ostiole. — 18. Asque octospore (pas de paraphyses) . — 19. Germination des ascospores, Sp, par un filament. (D'après M. Prunet.) — 20. ”

“ Un groupe de filaments conidiens fructifères. (Grossissement faible.) — 34. Filament conidien fructifère portant des grappes de conidies, Co. — 35. Extrémité d'un rameau conidifère, montrant les conidies portées sur de fins stérigmates. — 36. Un sclérote. — 37. Un sclérote portant une pezize. — 38. Une pezize grossie environ 16 fois.
— 39. Asque et paraphyses.
Sclerotinia Trifoliorum Eriksson (Sclerotinia ciborioides Rehm) . — 40. Sclérote portant des pezizes (grossi 4 fois) . — 41, 42, 43. Germinations d'ascospores par production de sporidies secondaires. (D'après M. Brefeld.) ”